一感受态细胞的制备（材料：DH5a菌）1. 下午三点左右将大肠杆菌接种于培养管中（取冻存的大肠杆菌接种于 5ml LB 培养基中或用牙签挑菌培养），以 220rpm 在摇床上震荡过夜培养。2第二天取已经摇好的的菌液50或100ul接种于盛有5mlLB培养基的培养管中， 每隔20分钟观察一次（大肠杆菌大约20分钟繁殖一次），2到3个小时后培养 基变浑浊，将培养管置于灯光下摇动会出现大肠杆菌的絮状条带，此时培养液的OD600nmO.5,细胞数小于10的8次方。3将培养好的大肠杆菌倒到1.5ml的eppendorf管中（将菌体混匀后再倒），以 10000rpm，离心1min.倒掉上清液后将培养管中的液体混匀后继续倒到 eppendorf管中并于冷冻离心机中离心，直至将培养管中的菌液全部离心完毕。4. 倒净上清液后将盛有菌体的 eppendorf 管置于冰上，加入 100ul 冰的氯化钙 （0.1M）溶液，并将菌体与溶液混合均匀（用手指用力弹），置于冰上静置10min（此时勿忘将氯化钙同样至于冰上保持其冰冷）。5. 将eppendorf管置于冷冻离心机中以8000rpm，离心1min。6弃上清后加50ul的氯化钙溶液混合均匀，若有液体溅到eppendorf管壁上可 以进行短时离心，此时已制成大肠杆菌的感受态细胞。大肠杆菌至于冰上备用， 或于-80C保存。二 转化（transformation）1.另取 1.5ml 的 eppendorf 管置于冰上（做好相应标记），将含有感受态细胞的 菌液混匀后取10ul的感受态细胞加入到eppendorf管中，随后加入1ul的质粒 混匀（用手指肚轻弹），至于冰上静置 30min。2将离心管置于42摄氏度的水浴锅中1到2min,随后迅速置于冰上，并向离心 管中加入 500ul LB 培养基混匀后置于摇床上震荡培养 1 小时（37 摄氏度， 220rpm，使菌体恢复正常生长状态）。3用移液枪从离心管中取已经摇好的菌液100ul均匀的加入到相应的选择培养基 上，用刮刀将菌液均匀的涂布到培养皿上过夜培养。4第二天用牙签挑取单个菌落接种到相应的选择培养基上，使其形成携带单克 隆质粒的菌落。5.于下午3点左右挑取少量大肠杆菌接种到5ml含有相应抗生素的LB液体培 养基中，于摇床上以220rpm震荡过夜培养（最好不要超过16小时），第二天开 始提取质粒。三提取质粒操作步骤：1. 柱平衡步骤：向吸附柱CP3中（吸附柱放入收集管中）加入500 U1的平衡液 BL,12,000 rpm （13,400Xg ）离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱 重新放回收集管中。（请使用当天处理过的柱子）2. 取1-5 ml过夜培养的菌液加入离心管中，12,000 rpm （13,400Xg ）离心1 分钟，尽量吸除上清（菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心 管中）。3. 向留有菌体沉淀的离心管中加入250 口l溶液P1 （请先检查是否已加入 RNaseA），使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意：如果有未彻 底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。4. 向离心管中加入250 口l溶液P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。 注意：温和地混合，不要剧烈震荡，以免污染基因组DNA。此时菌液应变得清亮 粘稠,所用时间不应超过5 分钟,以免质粒受到破坏。5. 向离心管中加入350 口l溶液P3,立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀， 此时会出现白色絮状沉淀。12,000 rpm (13,400Xg )离心10分钟，用移液 器小心地将上清转移到过滤柱CS (过滤柱放入收集管中)，注意尽量不要吸出沉 淀。注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白 色沉淀，可再次离心后取上清。6. 12,000 rpm (13,400Xg )离心2分钟，小心地将离心后收集管中得到的溶 液转移到吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中)，(如果过滤柱中有残余的液体 说明步骤4 吸取的上清中杂质过多，可以延长离心的时间； 如果离心后收集管 底部有少量的沉淀，尽量的吸取上清)。7. 12,000 rpm (13,400Xg ) 离心30-60 秒，倒掉收集管中的废液，将吸附 柱CP3放入收集管中。8. 向吸附柱CP3中加入500 口 l去蛋白液PD，12,000 rpm (13,400Xg )离心 30 60秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP3放入收集管中。9. 向吸附柱CP3中加入700 口 l漂洗液PW (请先检查是否已加入无水乙醇)， 12,000 rpm (13,400Xg)离心30 - 60秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP3 放入收集管中。10. 向吸附柱CP3中加入500 口l漂洗液PW，12,000 rpm (13,400Xg )离心 30 - 60秒，倒掉收集管中的废液。注意：加入漂洗液PW后，如果室温静置2-5分 钟，有助于更好地去除杂质。11. 将吸附柱CP3放入收集管中，12,000 rpm (13,400Xg )离心2分钟，目 的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶 反应(酶切、PCR等)实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附 柱CP3开盖，置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。12. 将吸附柱CP3置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50 - 100 口 l洗脱缓冲液TB,室温放置2分钟，12,000 rpm (13,400Xg )离 心2分钟，将质粒溶液收集到离心管中。注意：为了增加质粒的回收效率，可将 得到的溶液重新加入离心吸附柱中，重复步骤12。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液，应保 证其pH值在7.0-8.5范围内(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH值低于 7.0会降低洗脱效率。洗脱缓冲液体积不应少于50 口 l，体积过小影响回收效率。 且DNA产物应保存在-20C，以防DNA降解。四琼脂糖凝胶电泳